将MMEJ作为基因编辑的替代途径

由玛丽传动装置

如果你关注CRISPR的研究,你就会知道如何使用异源end-joining (NHEJ)删除或删除homology-directed修复(HDR)来进行精确的基因组编辑。但是你是否听说过另一种双链断裂修复机制:MMEJ(微同源介导的末端连接)?MMEJ是另一种末端连接形式,只需要很小的同源区域(5-25 bp)就可以修复,从而更容易构建靶向载体。Addgene储户隆山本的实验室利用MMEJ创建了一种新的CRISPR基因敲入方法,称为PITCh (Precise捕获到TargetChromosomes)。使用他们的沥青质粒在美国,GFP敲入细胞系可以在大约一个半月的时间内被创造出来,而不需要复杂的同源臂克隆。

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MMEJ:介绍

在双链断裂后修复DNA有三种主要方法。HDR从具有侧翼序列同源性的修复模板中复制序列,实现无错误的DSB修复。NHEJ以一种容易出错的方式连接DSB的两端,常见的是插入和删除。相比之下,MMEJ使用DSB侧边5-25 bp的微同源区域来修复DNA。DNA末端被咀嚼回以显示同源性,允许链退火。然后DNA合成填补了空白。最终的结果是微同源性之间区域的缺失和单个微同源性序列的保留。的更多机械细节HDRNHEJ,请参阅链接的博客文章。

同源定向修复、非同源端连接和微同源端连接

与NHEJ和HDR相比,MMEJ并没有得到太多的报道。然而,这一过程占TALENs和CRISPR突变的百分比。MMEJ在M期和S期早期活跃,而HDR则不活跃,不同的生物对NHEJ、HDR和MMEJ修复的平衡也不同。MMEJ不能产生像HDR那样的“完美修复”,但它比NHEJ更可预测。如图所示,双链断裂侧面的短(5-25 bp)同源区域产生了微同源性之间序列的精确缺失。

MMEJ相对于HDR有一定的优势。一些物种没有良好的HDR系统,即使存在修复模板,NHEJ也会更受青睐。HDR也面临着克隆的困境——同源性越长,重组的效率就越高,但是同源臂越长,克隆的时间就越长。相比之下,MMEJ所需要的短的同源性可以通过PCR扩增轻松添加。鉴于HDR对敲入无效,一些实验室使用NHEJ进行全质粒整合;然而,由于NHEJ是容易出错的,这样的系统很可能会在插入的侧翼引入额外的核苷酸。如果DNA退火结束不正确,除了预期的缺失外,MMEJ还可能引入、替代或删除核苷酸,但频率应低于NHEJ。

推介:利用MMEJ进行基因敲入

基于实验室之前的工作,佐久间等。描述一个mmej介导的将GFP-Puro盒敲入到终止密码子上游的特定位点的详细协议。简单地说,PITCh载体应与GFP-Puro盒侧翼的插入位点具有5 '和3 '的微同源性。敲入需要三个双链断裂:一个在GFP-Puro盒的两侧,一个在基因组位点的5 '和3 '微同源性之间。前两个断裂是通过一个通用的PITCh-gRNA诱导的;第三个断裂由插入位点特异的gRNA完成。这些双链断裂允许两组微同源性(5 '和3 ')进行退火,将GFP-Puro盒敲入位点(见下图)。双mmej策略看起来与HDR非常相似,但它是使用更小的同源区域来完成的,这有利于更容易的克隆。

使用PITCH进行基因编辑

PITCh缩写协议

步骤1:在PITCh矢量中生成微同源性

通过PCR将~20 bp的5 '和3 '微同源性添加到GFP-Puro盒中,并将该构建物插入到PITCh载体中在融合SLIC克隆

步骤2:设计一个插入位点特异的gRNA

gRNA应该以你感兴趣基因的最后一个编码外显子为目标。为了更好的应用,应该将这个gRNA克隆到含有Cas9和PITCh-gRNA的载体中。

第三步:将PITCh载体与携带Cas9的载体以及PITCh-和位点特异性gRNAs进行杂交

第四步:选择嘌呤霉素耐药细胞

第五步:PCR扩增并测序,验证GFP-puro的正确插入

为了降低脱靶效应的风险,Sakuma等人对PITCh-gRNA进行了优化,使其在哺乳动物基因组中实现最小的脱靶结合crispr.mit.edu.他们在HEK293细胞中测试了他们的系统,将GFP-Puro盒集成到FBL轨迹。通过对嘌呤霉素抗性克隆的测序,他们发现80%和50%的克隆分别在5 '和3 '连接处显示正确的插入。这些结果表明,PITCh是一种稳健的基因组插入方法。如果你想将大量的物质整合到基因组中,PITCh也可以适用于整个质粒整合。

开放式问题和替代系统

从Addgene中获得的现成的PITCh质粒非常适合表达绿色荧光蛋白从一个特定的启动子,这项技术可以适用于其他转基因。值得注意的是,观察到的荧光水平将取决于内源性启动子和感兴趣位点的3 ' UTR,因为GFP-Puro将插入终止密码子的上游。一个潜在的问题是GFP-Puro是否会改变它所跟随的基因的表达。

为了增加多功能性,改良PITCh以插入基因将是有利的AAVS1,即人类基因组的“避风港位点”Dalvai et al。他使用HDR将cDNA结构插入该位点。需要问的一个重要问题是,基于pitch的基因组插入的效率与使用核酸酶的CRISPR粘端插入的效率相比如何Cpf1.由于Cpf1以交错模式切割,它被认为是理想的hdr独立敲入,但这种可能性仍在探索中。

更广泛地说,Sakuma等人对MMEJ的使用代表了研究人员可以利用CRISPR基因编辑的另一种策略。在HDR下调的生物体中,MMEJ代表了另一种进行靶向修饰的方法。最近出版的Zhang et al。使用MMEJ将FLAG标签插入到致病真菌的基因组中来自烟曲霉属真菌,由于NHEJ在该物种中优于HDR,因此很难进行修饰。随着CRISPR技术的不断发展,很明显,这个编辑平台的力量在于核酸酶及其应用的多样性。看看MMEJ可以启用哪些新的编辑可能性是很有趣的。


参考文献

1.Sakuma, Tatsushi等(2016)。“mmej辅助基因敲入使用TALENs和CRISPR-Cas9与PITCh系统。”Nat Protoc。11(1): 118 - 33所示。PMID: 26678082

2.Dalvai, Mathieu等人(2015)。“一种可扩展的基于基因组编辑的绘制人类细胞中多蛋白复合物的方法。”细胞的代表。13: 621 - 633。PMID: 26456817

3.张驰,张秀华孟,魏晓磊,卢玲。(2016).“通过微同源性介导的末端连接,高效CRISPR突变来自烟曲霉菌。真菌麝猫生物。86: 47-57。PMID: 26701308

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