Rosella:研究自噬的荧光ph -生物传感器

由贝丝学会主席

罗塞拉是一个pH-sensitive荧光生物传感器最近在Addgene中沉积的马克·普雷斯科特博士.本系统用于监测和分析酵母细胞的细胞质和细胞器的自噬。自噬(希腊语,意为“自我吞噬”)是由营养缺乏引起的,以细胞质和细胞器为目标,进入液泡/溶酶体进行降解和循环。Rosella的自噬感知能力的关键在于,当它从一个更中性的pH室,如细胞质,到液泡的更高的pH时,它的荧光发射光谱发生了变化。继续读下去,了解更多关于研究自噬的先前方法,以及Rosella如何改进它们。

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研究自噬的方法

生化检测

  • 长寿蛋白降解:这种方法测量放射性标记的长寿蛋白作为自噬替代物的降解率。细胞与同位素标记的氨基酸一起培养数小时至数天,然后用未标记的氨基酸进行短期生长。这个洗出期主要通过蛋白酶体降解去除放射性标记的短命蛋白质。然后通过测量培养上清液中的放射性量来诱导和量化自噬(这表明蛋白质降解)。为了控制其他途径引起的蛋白质降解,标准做法是比较使用或不使用自噬抑制剂处理的样品之间的降解率。虽然这种方法确实提供了自噬的定量测量,但它只测量大量自噬(而不是提供关于正在降解的蛋白质或细胞器的更细粒度细节),而且速度较慢。

  • 碱性磷酸酶活性:在酵母中PHO8基因编码液泡碱性磷酸酶。正常情况下PHO8在内质网合成,通过分泌途径传递到液泡,然后裂解生成活性形式的蛋白质。为了监测自噬,我们表达了Pho8Δ60突变蛋白。Pho8Δ60以非活性形式定位于胞质,除非诱导自噬。然后胞质的非选择性大自噬导致Pho8Δ60在液泡中积累,在液泡中它被裂解生成一种活性酶。Pho8磷酸酶活性或Pho8从未裂解到裂解的分子量转移是本实验的最终读数。这也是自噬的定量测量,但是,就像上面的蛋白质降解分析一样,它是缓慢的,而且只测量整体自噬。

形态分析

  • 电子显微镜电子显微镜是研究自噬的传统方法。这种方法依赖于基于形态学识别自噬结构。自噬体相对容易识别:双膜结构包含未消化的细胞质内容物。与液泡或溶酶体融合的自噬体更难识别,因为它们的内容物可能处于不同的降解阶段。此外,电子显微镜分析是费时的。

  • gfp标记的Atg8p或LC3ATG8是影响自噬的一组基因(ATG在酵母)。Atg8p(“p”代表蛋白质)与自噬体膜有关,因此用GFP标记它可以跟踪酵母中自噬体前结构、自噬体和自噬体的定位或积累。哺乳动物Atg8p同源物,即gfp标记的LC3,也可以用来监测自噬,但在某些条件下,它以自噬无关的方式聚集。此外,跟踪Atg8p或LC3不能提供关于自噬体内容的信息,也不能提供关于液泡或溶酶体中被降解的信息,因为一旦自噬体与液泡或溶酶体融合,Atg8p和LC3都会被降解或释放。

罗塞拉荧光性质

罗塞拉生物传感器(右图)得名于澳大利亚鹦鹉(左图)。

Rosella是一种双色发射生物传感器,以一种色彩鲜艳的澳大利亚鹦鹉命名。它由两个串联荧光蛋白组成:相对ph不敏感的RFP变体,Ds金宝搏app下载Red。T3和ph敏感的GFP变异,超黄道荧光蛋白(SEP)。它们由一个9个氨基酸连接在DsRed.T3的c端。Rosella的激发和发射光谱总结见表1。DsRed是Rosella的永久荧光标记部分:无论在细胞中的位置如何,它都会发出红色荧光。SEP的pH敏感性意味着Rosella会发出绿色荧光,除非它是在酸性环境中,如液泡或溶酶体。根据Rosella的定位,我们总结了它发出的荧光颜色,详见表2。

表1:罗塞拉的激发和发射光谱综述。

组件 发射 pH值范围
安全域。T3

488, 543*, 568 nm

587海里

~ 4.9 - 9

9月

488 *海里

508海里

~ 6.5 - 9

* Rosado等人确定的最优顺序激发波长:参见表2了解pH对Rosella荧光特性的更多细节。

表2:定位对Rosella荧光发射的影响。

本地化 pH值 发射颜色
胞质

~ 7.5

红色的绿色
线粒体

~8

红色的绿色

液泡

~ 6.2

红色的

溶酶体 ~4.8 红色的

用Rosella研究酵母的自噬

当没有信号序列表达时,Rosella靶向胞质,并通过柠檬酸合酶的线粒体靶向序列靶向线粒体。在正常生长条件下,两种变体都被排除在液泡之外,并发出红色和绿色荧光。氮饥饿诱导自噬4小时后,液泡内积累红色而非绿色荧光。图2是细胞质线粒体Rosella有和没有自噬时荧光的一个例子。在这两种情况下,液泡中的红色荧光随着暴露于自噬诱导条件的时间延长而增加。

左侧为酵母细胞质,右侧为线粒体

Rosella使研究自噬背后的机制更容易,通过跟踪什么被运输到酵母液泡(如细胞质,线粒体),而不是跟踪一般的自噬标记。这对于比较整体自噬和线粒体的靶向自噬特别有用。所示萨尔基扬等。也可以使Rosella融合,从而监测你感兴趣的蛋白质的自噬。

你准备好试试罗塞拉了吗?两者cytosol-targetedmitochondria-targeted变体可从Addgene获得。


工具书类

1.罗萨多,米jaljica, D, Hatzinisiriou, I., Prescott, M., & Devenish, R. J.(2008)。一种荧光ph生物传感器,用于报告酵母胞质和细胞器的液泡翻转。自噬,4(2), 205 - 213。doi: 10.4161 / auto.5331。PubMedPMID: 18094608

2.范迪诺,L. B., Labasky, M. E., Forostyan, T., colsimo, L. K., Graham, T. E.(2015)。使用单一荧光生物传感器快速平行测量哺乳动物细胞的巨噬和自噬。科学报告,5(1) doi: 10.1038 / srep12397。PubMedPMID: 26215030.公共医学中心PMCID: PMC4517063

3.Mizushima, N., Yoshimori, T., & Levine, B.(2010)。哺乳动物自噬研究的方法。细胞,140(3), 313 - 326。doi: 10.1016 / j.cell.2010.01.028。PubMedPMID: 20144757.公共医学中心PMCID: PMC2852113

4.李国强,李国强(2007)。从酵母到人的自噬监测方法。自噬,3(3), 181 - 206。doi: 10.4161 / auto.3678。PubMedPMID: 17224625

5.野田,T. & Klionsky, D. J.(2008)。第3章非特异性自噬定量Pho8Δ60检测。自噬的酶学方法:低真核生物和非哺乳动物系统,A部分,33-42。doi: 10.1016 / s0076 - 6879(08) 03203 - 5。PubMedPMID: 19185711

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